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酶標抗體染色方法

 

  【質量鑒定】

  制備的PAP復合物應檢測酶和抗體的含量,以鑒定PAP復合物的質量。常用分光光度計檢測PAP的復合物在280nm(IgG的最大吸收波長)和400nm(HRP的最大吸收波長)的光密度值(OD值),按下式計算IgG和HRP的含量: 

  一般HRP/抗HRP的克分子比達1.9時,可分裝冷藏于-85℃冰箱,據報告如此冷藏的PAP復合物可保留14年之久,活性無改變。但稀釋后的PAP復合物不穩(wěn)定,4℃可保存2~3周。最好臨用前配制。

  【PAP復合物的特征】

  PAP復合物的形成不同于其它抗原抗體反應,在抗原稍過量時,所有的抗HRP抗體均參與形成可溶性PAP復合物,僅殘留少許游離的HRP,而大多數抗原抗體反應需要抗原絕對過量才能形成可溶性復合物。PAP復合物的形狀相當穩(wěn)定,不受抗原量的影響,無論最初加入的抗原抗體過量與否,最終形成的PAP復合物其HRP/抗HRP之比絕大部分為3:2。應用離心沉降、液相擴散等方法分析表明:PAP復合物沉降系數為11.5s,分子量為400~430kD,由此可推算出酶與抗體之比為3:2,即每個PAP生命物由3個HRP分子和2個抗HRP抗體組成,呈五角形結構,3個角為HRP,另兩個角為抗HRP抗體。采用H2O2-DAB染色,電鏡下已經觀察到PAP復合物五角形環(huán)狀結構,直徑平均21nm 。這種結構異常穩(wěn)定。據報告PAP復合物的抗HRP抗體與HRP結合常數為108,在此可溶性復合物中,即使存在少量游離HRP,亦不影響其穩(wěn)定性。

  2.PAP染色原理及步驟

  (1)原理:與酶橋法相似,都是借助橋抗體將酶連結在與組織抗原結合的第一抗體上,所不同的是PAP法將酶橋法的步驟3、4合并為1,用PAP復合物代替,即第三步用PAP復合物孵育切片,故稱PAP法。PAP復合物中的抗HRP抗體和第一抗體為相同種屬動物的IgG,所以橋抗體能夠作為“橋”將PAP復合物連結在第一抗體上。醫(yī)學全在線www.med126.com

 。2)染色步驟:主要步驟與酶橋法相似,如圖4-5。

  ①切片準備及第一抗體孵育前處理同間接法;切片與特異性第一抗體孵育同酶橋法。

 、谟眠^量的橋抗體孵育,作用同酶橋法。

圖4-5 PAP法主要染色步驟

 、塾秒x體制得的PAP復合物(1:30~300稀釋)孵育1~1.5h(室溫),使其被橋抗體連結在第一抗體上。亦可用ALP抗ALP復合物代替。

 、茱@色觀察等同間接法。

  3.PAP法的評價  PAP法應用比較廣泛,特別是近幾年,PAP、ABC等試劑盒商品化,在科研和臨床病理診斷等中有著廣闊的前景。其主要特征和注意事項如下:

 。1)抗體活性高:非標記抗體酶法最大限度地保存了抗體活性,因為在所有的反應過程中,任何抗體均未被酶連結,避免了標記過程(共價鍵連結)對抗體活性的損害。

 。2)靈敏度高:靈敏度是指ICC方法所能發(fā)現最少數量抗原而言。從理論上講,PAP法應該較間接法敏感2倍以上,因為酶標抗體法中,酶與抗體為1:1標記,而PAP復合物含有3個HRP分子。假設一個第一抗體同一個酶標抗體/PAP復合物結合,則被連結于抗原部位的酶分子數量不同,所以PAP法應較敏感。我們知道組織切片抗原的含量是未知的,所以不能直接在切片上檢測方法的敏感度;但可以假設相鄰切片抗原濃度相對恒定,采用相鄰切片染色,以產生特異性染色所用的第一抗體最低濃度作為方法的敏感度,用信噪比(Signal/moise,S/N)表示。據此,Sternberger(1979)認為PAP法較間接法敏感20~25倍,可進一步稀釋第一抗體,以節(jié) 省其用量。但實際上PAP法與間接法之間的差異并非如此明顯。筆者在實驗中注意到,PAP顯示陽性的抗原,相同的稀釋倍數的第一抗體在間接法中亦呈陽性反應,而時間陰性時,PAP法亦為陰性。其原因尚不清楚,可能與橋抗體和第一抗體結合時,“剩余”(游離)的Fab段少,PAP復合物被連結的相應減少有關。另外 ,PAP復合物分子量較大(400KD),冰凍切片時,對組織穿透性遠不如酶標抗體(分子量90~180kDa),所以不適于免疫電鏡的標本制作。

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